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徠卡共聚焦課堂第七講:活細胞成像技術(shù)知識點

閱讀:917      發(fā)布時間:2022-1-4
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可視化生命分子動力學
理解復(fù)雜和/或快速的細胞動力學是探索生物過程的重要一步。因此,,當今的生命科學研究越來越關(guān)注實時動態(tài)過程,,如細胞遷移,細胞,、器官或整個動物的形態(tài)變化以及活體標本的實時生理(例如細胞內(nèi)離子組分的變化)事件,。解決這些挑戰(zhàn)性需求的一種方式是采用被統(tǒng)稱為活細胞成像的光學方法?;罴毎上窨裳芯炕罴毎膭討B(tài)過程,,而非提供細胞當前狀態(tài)的“快照"——它把快照變成了電影?;罴毎上窨商峁﹩蝹€細胞,、細胞網(wǎng)絡(luò)(原位)甚至整個生物體(體內(nèi))中動態(tài)事件的空間和時間信息。這些特點讓活細胞成像成為解決細胞生物學,、癌癥研究,、發(fā)育生物學和神經(jīng)科學問題的必要技術(shù)。
近年來,,電子學,、光學和分子生物學都取得了重大進步,科學家們可以很容易地進行活細胞成像,。

圖片 1.png

 
 
用于活細胞成像的方法
顯微技術(shù)在活細胞成像方面的應(yīng)用也非常廣泛,。通常,使用復(fù)合顯微鏡和對比方法(例如相差和微分干涉相差(DIC))隨著時間觀察細胞的生長,,細胞聚集或細胞運動,。此外,通常使用立體顯微鏡或宏觀鏡進行較大樣本(例如斑馬魚胚胎發(fā)育)的延時成像,。在過去數(shù)十年中,,先進熒光技術(shù)變得越來越重要。隨著共聚焦顯微鏡應(yīng)用的迅速增加,,生物研究的視角已由平面轉(zhuǎn)向三維,。以下是一些常用技術(shù)的簡要概述,。
 
離子成像——觀察離子濃度的變化
一種常用的方法是使用熒光染料或特別設(shè)計的蛋白質(zhì)來改變其在鈣結(jié)合時的發(fā)射行為的離子成像(鈣、氯,、鎂),。這使得研究人員可以觀察到細胞離子濃度的動態(tài)變化。由于細胞胞質(zhì)溶膠中的離子組成決定了細胞的很多重要功能,,如神經(jīng)元的興奮性,、基因轉(zhuǎn)錄和細胞運動(僅舉幾例),細胞內(nèi)離子在空間和時間上的調(diào)節(jié)是生物學研究的主要興趣,。此外,,使用特殊的熒光染料可以對細胞內(nèi)的pH值或電壓進行成像。一種用來對離子水平,、pH值或電壓變化進行成像的特殊技術(shù)是比率成像法,。這些方法能夠精確確定細胞內(nèi)鈣濃度等信息,而非像非比率方法那樣監(jiān)測相對變化,。
 
FRET – 量化蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用
要檢測動態(tài)蛋白質(zhì)相互作用,,可以在活細胞實驗中對FRET(熒光共振能量轉(zhuǎn)移)和BRET(生物發(fā)光共振能量轉(zhuǎn)移)事件進行成像。FRET是量化分子動力學的有利工具,,如蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用,、蛋白質(zhì)-DNA相互作用和蛋白質(zhì)構(gòu)象變化等。FRET成像通常使用GFP(綠色熒光蛋白)的衍生物,,尤其是CFP和YFP(分別為青色和黃色熒光蛋白),,它們各自使用分子生物學方法連接到感興趣的目的蛋白質(zhì)上。然后用熒光激發(fā)CFP分子,。一旦目的蛋白質(zhì)在空間上接近(<20 nm),CFP將作為供體并以光的形式發(fā)射能量轉(zhuǎn)移給作為受體的YFP,。研究人員將觀察到從CFP發(fā)出的藍色熒光轉(zhuǎn)變?yōu)閺腨FP發(fā)出的黃色熒光,。使用BRET時,供體是生物發(fā)光分子(例如熒光素酶衍生物),,與FRET一樣,,GFP衍生物作為受體。

圖片 2.png

 
圖1:擬南芥的共聚焦活細胞圖像,;內(nèi)質(zhì)網(wǎng):GFP標記為綠色,,自發(fā)熒光葉綠體為紅色,透射光為藍色,?;谶@樣的圖像,可以完成FRET或FRAP等分析,。
 
FRAP–監(jiān)測蛋白質(zhì)和囊泡轉(zhuǎn)運
光漂白后熒光恢復(fù)(FRAP)是一種常用的監(jiān)測蛋白質(zhì)或囊泡轉(zhuǎn)運的方法,。熒光蛋白(通常是GFP)附著在目的蛋白質(zhì)上(即要監(jiān)測此蛋白質(zhì)的運動),。通常情況下,整個細胞最初發(fā)出熒光,,因為整個細胞中可能含有豐富的蛋白質(zhì),。然后細胞的某個區(qū)域,通常是神經(jīng)元細胞中的細胞突起,,如軸突或樹突,,暴露在高強度的光下(通常是激光),該特定區(qū)域的熒光被破壞(漂白),。隨著目的蛋白質(zhì)的移動,,來自細胞其他區(qū)域的蛋白質(zhì)會以一定的速度重新侵入漂白區(qū)域,然后漂白區(qū)域的熒光恢復(fù),。這能讓研究人員深入了解胞內(nèi)運輸動力學,。
 
TIRF–觀察靠近細胞膜的生物進程
TIRF(全內(nèi)反射)顯微鏡是一種特殊技術(shù),用于觀察位于或靠近細胞質(zhì)膜的事件,。TIRF顯微鏡使用僅穿透細胞60-250 nm的瞬逝場進行熒光染料激發(fā),,可提供出色的z分辨率,從而能對質(zhì)膜中或附近發(fā)生的事件進行成像(例如分子運輸至質(zhì)膜),,而不會被細胞內(nèi)分子發(fā)出的熒光所掩蓋,。
 
TIRF圖像:靠近膜的Galectin-3半乳糖凝集素3囊泡沿肌動蛋白絲的運輸。

圖片 3.png

 
圖2A:落射熒光概覽圖像,,

圖片 4.png

 
圖2B:TIRF概覽圖像,,框選部分如C所示,

圖片 5.png

 
圖2C:TIRF截面的時間序列,;時間以秒為單位,。靠近膜(箭頭)的Galectin-3囊泡(用YFP標記)首先沿著肌動蛋白絲(從底部向上)運輸,,轉(zhuǎn)移到另一條肌動蛋白絲(88秒),,向左移動(109秒),再向右運輸,,再次轉(zhuǎn)換肌動蛋白絲,,然后向上運輸(246秒)。
YFP:紅色,;CFP:綠色,;概覽圖像的標尺:20 µm;截面:6 µm,;TIRF穿透深度:110 nm,。由德國馬爾堡大學的Ralf Jacob提供
 
光活化——監(jiān)測基因表達和蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)運
最近開發(fā)的一種被稱為光活化的方法能夠選擇性地標記細胞或整個生物體內(nèi)的特定區(qū)域或感興趣區(qū)域。進行光活化時,,使用專門設(shè)計的染料或熒光蛋白,,如光活化綠色熒光蛋白(paGFP)或Kaede,。這些熒光團在正常狀態(tài)下不發(fā)熒光。但在用特定波長的光照射后,,它們可以像傳統(tǒng)熒光團一樣被激活,,發(fā)出熒光。在很多情況下,,將這些蛋白質(zhì)與某些目的蛋白質(zhì)進行基因融合,,可以監(jiān)測其表達或轉(zhuǎn)運。然后可以應(yīng)用FRAP或粒子跟蹤等方法來進一步研究目的蛋白質(zhì),。
 
MPE–深入研究
在細胞培養(yǎng)實驗中,,現(xiàn)代生物學研究需要真正的體內(nèi)研究來補充“類似體內(nèi)"研究。但很難研究像老鼠這樣的生物體內(nèi)發(fā)生的過程,。多光子激發(fā)(MPE)顯微鏡能夠更深入地穿透組織,,因為與用于單光子激發(fā)的短波長光相比,近紅外激發(fā)光具有更長的波長,,散射更少,。MPE技術(shù)的非線性特性將光漂白和光毒性限制在焦點區(qū)域。這對長期研究非常有益,,因為熒光蛋白和生物體都受到這些問題的困擾,。據(jù)報告,使用合適的標本和顯微鏡設(shè)置,,成像深度可以深入組織中數(shù)毫米,。激發(fā)的精確定位使其也適用于光子操縱。該方法在神經(jīng)生物學中得到了廣泛的應(yīng)用,。
 
STED——納米級的細胞動力學研究
受激發(fā)射損耗(STED)顯微鏡使科學家能夠研究超出光學分辨率極限的結(jié)構(gòu),。該技術(shù)利用熒光染料的特性,受激發(fā)射,,以消除可檢測的信號,。目前已成功成像50-70 nm的細胞內(nèi)結(jié)構(gòu)。提高分辨率對于研究小的細胞內(nèi)結(jié)構(gòu)非常重要,。尤其是對于想研究共定位事件的人來說,,提高分辨率可以產(chǎn)生更真實的結(jié)果,。與其他超分辨率技術(shù)相比,,STED的隨機獨立性能夠?qū)崿F(xiàn)極為快速的成像。已實現(xiàn)視頻速率STED采集,,可以實時研究細胞動力學,。

圖片1.png

 
圖3:使用snap-tag技術(shù)的STED活細胞成像:Vero細胞,結(jié)構(gòu):EB3,,瞬時轉(zhuǎn)染,;標簽:Oregon Green 488,。
 
FLIM–活細胞的空間測量
熒光壽命成像的優(yōu)點是數(shù)據(jù)不依賴于信號強度。因此不受光漂白和濃度變化等常見偽影的影響,。使用時間相關(guān)的單光子計數(shù),,通過單分子檢測數(shù)據(jù)重建FLIM圖像??梢杂涗浐头治鰜喖{秒熒光壽命的最小變化,。該方法可用于研究導(dǎo)致熒光壽命改變的任何類型的細胞外和細胞內(nèi)環(huán)境改變?;贔LIM的FRET分析對發(fā)射強度不敏感,,從而提高了定量數(shù)據(jù)的精度。
 
CARS和SRS – 使用振動對比的無標方法
幾乎所有的活細胞熒光成像方法都基于熒光蛋白的基因表達,。這涉及到大量的技術(shù)工作和高昂的費用,。此外,外部基因的表達可能會改變微環(huán)境,,從而導(dǎo)致數(shù)據(jù)與實際生理學情況的差異,。相干反斯托克斯拉曼散射(CARS)顯微鏡和受激拉曼散射(SRS)顯微鏡是不依賴于熒光染料的非線性共聚焦方法。這些無標記方法可對樣品中特定化學鍵的振動狀態(tài)進行成像,。生物體中特定化學鍵的積累,,例如軸突周圍髓鞘中的脂質(zhì),可以在無需染色的情況下以高分辨率和出色的信噪比質(zhì)量進行成像,。
 
未來屬于定量分析
生物學研究已經(jīng)脫離了描述性研究的時代,,進入了定量分析的時代。新的活細胞成像技術(shù)在空間和時間上都朝著分辨率更高的方向發(fā)展,。目前的技術(shù)發(fā)展主要是在納米范圍內(nèi)對單個分子和短至幾皮秒的分子反應(yīng)進行定量研究,。

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