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技術(shù)文章
間接免疫熒光法-檢測細(xì)胞內(nèi)抗原
點(diǎn)擊次數(shù)：4840 發(fā)布時(shí)間：2012-1-12
間接免疫熒光法-檢測細(xì)胞內(nèi)抗原
細(xì)胞內(nèi)抗原的檢測過程與細(xì)胞表面抗原檢測過程基本一致,，只是在與一抗孵育前，需要預(yù)先對細(xì)胞用非離子去污劑進(jìn)行透化處理,。www.biomart.cn/runwell/index.htm
1. 取已固定好的細(xì)胞爬片或甩片或經(jīng)過預(yù)處理的組織切片（石蠟或冰凍切片）,；
2. 用含0.2%TritonX-100或NP-40的PBS溶液透化固定后的細(xì)胞2min（室溫），有些標(biāo)本可能需要長達(dá)15min,，時(shí)間視抗原而定,；
3. 余下步驟接上述“細(xì)胞表面抗原的檢測-間接免疫熒光法”步驟（2）；
注意事項(xiàng)
1. 在使用前,，一抗二抗均應(yīng)測試其合適的稀釋度,。
2. 多聚甲醛的固定是不穩(wěn)定的，標(biāo)本經(jīng)多聚甲醛固定后,，應(yīng)再用去污劑處理,，如果標(biāo)本在水溶液中浸泡的時(shí)間過長，則會(huì)使交聯(lián)結(jié)構(gòu)解體,。因此,，應(yīng)避免固定后的標(biāo)本在水溶液中浸泡的時(shí)間過長。
3. 信號微弱的解決方法：
① 提高一抗和二抗的濃度以增強(qiáng)敏感性 ,，這必須測試各種濃度抗體的滴度,；
② 延長一抗和二抗的孵育時(shí)間。由于細(xì)胞染色時(shí)抗原吸附在固相載體上,，抗原抗體結(jié)合時(shí)間較在溶液中長,。孵育時(shí)間可因?qū)嶒?yàn)設(shè)計(jì)作適當(dāng)調(diào)整，但少于20min抗體和抗原幾乎不能有效結(jié)合,。在以上兩點(diǎn)中,，應(yīng)摸索出一個(gè)*條件以產(chǎn)生有效信號且保持良好的背景。這就需要反復(fù)試驗(yàn),，因?yàn)槊拷M抗體和抗原的情況會(huì)有所不同,；
③ 改變檢測方法，用共聚焦顯微鏡觀察,，可提高敏感性,。
4. 背景不好的解決方法
細(xì)胞樣本進(jìn)行熒光染色時(shí)，背景問題主要來自兩個(gè)方面,，即非特異性染色和特異性交叉反應(yīng),。
① 非特異性吸附：非特異性吸附背景問題的產(chǎn)生與抗原抗體的特異性結(jié)合無關(guān)。即一抗或二抗與樣品相互作用而發(fā)生吸附,，而不是與抗原發(fā)生特異性結(jié)合,。
*將所有抗體溶液或含蛋白的檢測試劑用100,，000′g離心30min以去除蛋白聚合物。
*滴定一抗和所用的檢測試劑,，以確定能夠產(chǎn)生合適信號的zui低濃度,。
*固定后，用飽和量并不被檢測試劑結(jié)合的非特異性抗體封閉樣品,，有效的封閉液包括5%的與標(biāo)記二抗來源相同的同種血清,、3%的BSA和3%的脫脂奶粉。
*用上述封閉液稀釋抗體和檢測試劑,。
*固定后,，在所有的緩沖液及洗滌液中加入2%吐溫-20。
*縮短一抗或標(biāo)記試劑的孵育時(shí)間,。
*充分洗滌（延長洗滌時(shí)間,，重復(fù)次數(shù)）。
*改變檢測方法,。
② 特異性背景：造成特異性背景問題的原因有三種因素,，即污染抗體所致假陽性、交叉反應(yīng)和樣品中含有能與Ig結(jié)合的蛋白質(zhì),。
*如用多克隆抗體,，應(yīng)滴定抗體（假陽性）。
*如用多克隆抗體,，親和純化特異性抗體（假陽性）,。
*如用多克隆抗體，用適當(dāng)?shù)谋闻K粉吸收以阻抑假陽性,。
*換用其他抗體（交叉反應(yīng)及假陽性）,。www.runwelltac.com