捷克PSI FluorPen FP110手持式葉綠素?zé)晒鈨x

FluorPen FP110手持式葉綠素?zé)晒鈨x用于實(shí)驗(yàn)室、溫室和野外快速測(cè)量植物葉綠素?zé)晒鈪?shù),，具有便攜性強(qiáng),、精確度高、性價(jià)比高等特點(diǎn),；雙鍵操作,，具圖形顯示屏，內(nèi)置鋰電和數(shù)據(jù)存儲(chǔ),，廣泛應(yīng)用于研究植物的光合作用,、脅迫監(jiān)測(cè)、除草劑檢測(cè)或突變體篩選,，還可用于生態(tài)毒理的生物檢測(cè),，如通過(guò)不同植物對(duì)土壤或水質(zhì)污染的葉綠素?zé)晒忭憫?yīng)，找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測(cè),。FP110配備多種葉夾型號(hào),，用于不同的樣品與研究。FluorPen FP110手持式葉綠素?zé)晒鈨x用于實(shí)驗(yàn)室,、溫室和野外快速測(cè)量植物葉綠素?zé)晒鈪?shù),，具有便攜性強(qiáng)、精確度高、性價(jià)比高等特點(diǎn),；雙鍵操作,，具圖形顯示屏，內(nèi)置鋰電和數(shù)據(jù)存儲(chǔ),，廣泛應(yīng)用于研究植物的光合作用,、脅迫監(jiān)測(cè)、除草劑檢測(cè)或突變體篩選,，還可用于生態(tài)毒理的生物檢測(cè),，如通過(guò)不同植物對(duì)土壤或水質(zhì)污染的葉綠素?zé)晒忭憫?yīng)，找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測(cè),。FP110配備多種葉夾型號(hào),，用于不同的樣品與研究。

應(yīng)用領(lǐng)域

   適用于光合作用研究和教學(xué),，植物及分子生物學(xué)研究,，農(nóng)業(yè)、林業(yè),，生物技術(shù)領(lǐng)域等,。研究?jī)?nèi) 容涉及光合活性、脅迫響應(yīng),、農(nóng)藥藥效測(cè)試,、突變篩選等。

·         植物光合特性研究

·         光合突變體篩選與表型研究

·         生物和非生物脅迫的檢測(cè)

·         植物抗脅迫能力或者易感性研究

·         農(nóng)業(yè)和林業(yè)育種,、病害檢測(cè),、長(zhǎng)勢(shì)與產(chǎn)量評(píng)估

·         除草劑檢測(cè)

•  教學(xué)

功能特點(diǎn)：

§   結(jié)構(gòu)緊湊、便攜性強(qiáng),，LED光源,、檢測(cè)器、控制單元集成于僅手機(jī)大小的儀器內(nèi),，重量?jī)H188g

§   功能強(qiáng)大,，是葉綠素?zé)晒饧夹g(shù)的結(jié)晶產(chǎn)品，具備了大型熒光儀的所有功能,，可以測(cè)量所有葉綠素?zé)晒鈪?shù)

§   內(nèi)置了所有通用葉綠素?zé)晒夥治鰧?shí)驗(yàn)程序,，包括2套熒光淬滅分析程序、3套光響應(yīng)曲線程序,、OJIP快速熒光動(dòng)力學(xué)曲線等

§   高時(shí)間分辨率,，可達(dá)10萬(wàn)次每秒，自動(dòng)繪出OJIP曲線并給出26個(gè)OJIP–test參數(shù)

§   FluorPen專業(yè)軟件功能強(qiáng)大,，可下載,、展示葉綠素?zé)晒鈪?shù)圖表,，也可以通過(guò)軟件直接控制儀器進(jìn)行測(cè)量

§   具備無(wú)人值守自動(dòng)監(jiān)測(cè)功能

§   內(nèi)置藍(lán)牙與USB雙通訊模塊，GPS模塊,，輸出帶時(shí)間戳和地理位置的葉綠素?zé)晒鈪?shù)圖表

§   配備多種葉夾型號(hào)：固定葉夾式（適用于大批量樣品快速測(cè)量）,、分離葉夾式（適用于暗適應(yīng)測(cè)量）、開(kāi)放葉夾式（適用于溫室,、培養(yǎng)箱進(jìn)行監(jiān)測(cè)）,、用戶定制式等

§   可選配野外自動(dòng)監(jiān)測(cè)式熒光儀，防水防塵設(shè)計(jì)

測(cè)量程序與功能

·         Ft：瞬時(shí)葉綠素?zé)晒?font face="Times New Roman">,暗適應(yīng)完成后Ft＝F0

·         QY：量子產(chǎn)額,，表示光系統(tǒng)II 的效率,，等于Fv/Fm(暗適應(yīng)狀態(tài))或ΦPSII (光適應(yīng)狀態(tài))。

·         OJIP：快速熒光動(dòng)力學(xué)曲線,，用于研究植物暗適應(yīng)后的快速熒光動(dòng)態(tài)變化

·         NPQ：熒光淬滅動(dòng)力學(xué)曲線,，用于研究植物從暗適應(yīng)到光適應(yīng)狀態(tài)的熒光淬滅變化過(guò)程。

·         LC：光響應(yīng)曲線,，用于研究植物對(duì)不同光強(qiáng)的熒光淬滅反應(yīng),。

·         PAR：光合有效輻射，測(cè)量環(huán)境中植物生長(zhǎng)可以利用的400-700nm實(shí)際光強(qiáng)（限PAR型號(hào)）,。

技術(shù)參數(shù)

• 測(cè)量參數(shù)包括F0,、Ft,、Fm,、Fm’、QY,、QY_Ln,、QY_Dn、NPQ,、Qp,、Rfd、PAR（限PAR型號(hào)）,、Area,、Mo、Sm,、PI,、ABS/RC等50多個(gè)葉綠素?zé)晒鈪?shù)，及3種給光程序的光響應(yīng)曲線,、2種熒光淬滅曲線,、OJIP曲線等
• OJIP–test時(shí)間分辨率為10μs（每秒10萬(wàn)次），給出OJIP曲線和26個(gè)參數(shù),，包括F0,、Fj,、Fi、Fm,、Fv,、Vj、Vi,、Fm/F0,、Fv/F0、Fv/Fm,、Mo,、Area、Fix Area,、Sm,、Ss、N,、Phi_Po,、Psi_o、Phi_Eo,、Phi–Do,、Phi_Pav、PI_Abs,、ABS/RC,、TRo/RC、ETo/RC,、DIo/RC等
• 測(cè)量程序：Ft,、QY、OJIP,、NPQ1,、NPQ2、LC1,、LC2,、LC3、PAR（限PAR型號(hào)）,、Multi無(wú)人值守自動(dòng)監(jiān)測(cè)
• 葉夾類型：FP110/S固定葉夾式,、FP110/D分離葉夾式、FP110/P開(kāi)放葉夾式,、FP110/X用戶定制式
  • PAR傳感器（限PAR型號(hào)）：80o入射角余弦校正,，讀數(shù)單位μmol(photons)/m2.s，可顯示讀數(shù),，檢測(cè)范圍400-700 nm
  • 測(cè)量光：每測(cè)量脈沖0–0.09μmol(photons)/m2.s,，0-100%可調(diào)
  • 光化學(xué)光：0–1000μmol(photons)/m2.s,，0-100%可調(diào)
  • 飽和光：0–3000μmol(photons)/m2.s，0-100%可調(diào)
  • 光源：標(biāo)準(zhǔn)配置藍(lán)光470nm,，可根據(jù)需求配備不同波長(zhǎng)的LED光源
  • 檢測(cè)器：PIN光電二極管,，667–750nm濾波器
  • 尺寸大小：超便攜,，手機(jī)大小,，134×65×33mm，重量?jī)H188g
  • 存貯：容量16Mb,，可存儲(chǔ)149000數(shù)據(jù)點(diǎn)

• • 顯示與操作：圖形化顯示,，雙鍵操作，待機(jī)8分鐘自動(dòng)關(guān)閉
  • 供電：可充電鋰電池,，USB充電,，連續(xù)工作48小時(shí)，低電報(bào)警
  • 工作條件：0–<?xml:namespace prefix = "st1" />55℃,，0–95%相對(duì)濕度（無(wú)凝結(jié)水）
  • 存貯條件：-10–60℃,，0–95％相對(duì)濕度（無(wú)凝結(jié)水）
  • 通訊方式：藍(lán)牙+USB雙通訊模式
  • GPS模塊：內(nèi)置
  • 軟件：FluorPen1.1專用軟件，用于數(shù)據(jù)下載,、分析和圖表顯示,，輸出Excel數(shù)據(jù)文件及熒光動(dòng)力學(xué)曲線圖，適用于Windows 7及更高操作系統(tǒng)

操作軟件與實(shí)驗(yàn)結(jié)果

產(chǎn)地：捷克

應(yīng)用案例

          地衣Peltigera aphthosa不同結(jié)構(gòu)的葉綠素?zé)晒夥治觯?/span>OJIP快速熒光動(dòng)力學(xué)曲線,、Fv/Fm最大光化學(xué)效率,、NPQ非光化學(xué)熒光淬滅（Chekanov K, et al. 2017）

         牡丹不同生長(zhǎng)階段的葉綠素?zé)晒夥治觯?font face="Times New Roman">Oyungerel S, et al. 2017）

參考文獻(xiàn)

1. JA Pérez-Romero, et al. 2018. Atmospheric CO2 enrichment effect on the Cu-tolerance of the C4 cordgrass Spartina densiflora. Journal of Plant Physiology 220: 155-166
2. SK Yadav, et al. 2018. Physiological and Biochemical Basis of Extended and Sudden Heat Stress Tolerance in Maize. Proceedings of the National Academy of Sciences 88(1): 249-263
3. D Balfagón, et al. 2018. Involvement of ascorbate peroxidase and heat shock proteins on citrus tolerance to combined conditions of drought and high temperatures. Plant Physiology and Biochemistry 127: 194-199
4. JI Vílchez, et al. 2018. Protection of Pepper Plants from Drought by Microbacterium sp. 3J1 by Modulation of the Plant's Glutamine and α-ketoglutarate Content: A Comparative Metabolomics Approach. Front. Microbiol. 9: 284
5. MC Sorrentino, et al. 2018. Performance of three cardoon c*rs in an industrial heavy metal-contaminated soil: Effects on morphology, cytology and photosynthesis. Journal of Hazardous Materials 351: 131-137
6. E Niewiadomska, et al. 2018. Lack of tocopherols influences the PSII antenna and the functioning of photosystems under low light. Journal of Plant Physiology 223: 57-64
7. S Singh, et al. 2018. Cadmium toxicity and its amelioration by kinetin in tomato seedlings vis-à-vis ascorbate-glutathione cycle. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology 178: 76-84
8. EL Fry, et al. 2018. Drought neutralises plant–soil feedback of two mesic grassland forbs. Oecologia 186(4): 1113–-125
9. B Duarte, et al. 2017. Disentangling the photochemical salinity tolerance in Aster tripolium L.: connecting biophysical traits with changes in fatty acid composition. Plant Biology 19(2): 239-248
10. OO Ajigboye, et al. 2017. Altered gene expression by sedaxane increases PSII efficiency, photosynthesis and growth and improves tolerance to drought in wheat seedlings. Pesticide Biochemistry and Physiology 137: 49-61

附：OJIP參數(shù)及計(jì)算公式

Bckg = background

Fo: = F50μs; fluorescence intensity at 50 μs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)